
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 355 |
تعداد مقالات | 3,429 |
تعداد مشاهده مقاله | 4,341,368 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 5,041,548 |
پیشبینی رویش علفهای هرز خردل وحشی (Sinapis arvensis L.) و شلمی (Rapistrum rugosum (L) All.) در کلزا | ||
تولید و ژنتیک گیاهی | ||
دوره 5، شماره 1 - شماره پیاپی 7، تیر 1403، صفحه 115-128 اصل مقاله (641.31 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/plant.2024.141273.1104 | ||
نویسندگان | ||
رحمان خاکزاد* 1؛ بهروز خلیل طهماسبی2 | ||
1مربی، گروه مهندسی کشاورزی، دانشگاه فنی و حرفهای، تهران، ایران | ||
2استادیار، مرکز نحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی جنوب استان کرمان، سازمان تحقبقات، آموزش و ترویج کشاورزی، جیرفت، ایران | ||
چکیده | ||
زمانبندی رویش علفهای هرز یکی از مهمترین متغیرهایی است که نحوه واکنش گونهها به اقدامات مدیریتی را تعیین میکند. از این رو برای پیشبینی الگوی رویش خردل وحشی و شلمی تحت عملیات مختلف مدیریتی آزمایشی به صورت طرح اسپلیت پلات در قالب بلوکهای کامل تصادفی در 3 تکرار در آموزشکده کشاورزی ساری در سال 1401 اجرا شد. فاکتورهای آزمایشی، دو سیستم خاکورزی رایج و بدون خاکورزی و سه دوز مختلف علفکش بوتیزان استار (صفر، 50 و 100 گرم ماده موثره در هکتار) بودند. تابع لجیستیک سه پارامتره روند کلی الگوی رویش خردل وحشی و شلمی را در برابر زمان دمای خاک (STT) به خوبی توصیف نمود. نتایج نشان داد خردل وحشی در سیستم بدون خاکورزی دارای میانگین زمان رویش کمتر (01/96) و شاخص سرعت رویش بالاتر (29/0) در مقایسه با سیستم خاکورزی رایج بود و با دریافت درجه روز رشد (T50) کمتر (21/742)، سریعتر به 50 درصد رویش تجمعی خود دست یافت. در مقابل شلمی در سیستم خاکورزی رایج دارای میانگین زمان رویش کمتر (38/75) و شاخص سرعت رویش بالاتر (26/0) نسبت به سیستم بدون خاکورزی بود و با دریافت T50 پایینتر (52/616)، سریعتر به 50 درصد رویش تجمعی خود رسید. همچنین نتایج نشان داد که خردل وحشی و شلمی در دوز 100 گرم ماده موثره در هکتار بوتیزان استار دارای بیشترین میانگین زمان رویش (به ترتیب 10/103 و 30/78) و پایینترین شاخص سرعت رویش (به ترتیب 08/0 و 07/0) بودند و با دریافت T50 بالاتر (به ترتیب 67/851 و 75/640)، دیرتر به 50 درصد رویش تجمعی گیاهچه دست یافتند. در مجموع شلمی در هر دو سیستم خاکورزی و هر سه دوز علفکش بوتیزان استار دارای میانگین زمان رویش کمتر در مقایسه با خردل وحشی بود و با دریافت T50 پایینتر، سریعتر به 50 درصد رویش تجمعی گیاهچه در ابتدای فصل رشد دست یافت. بر این اساس مرحله رشدی مناسب برای کنترل شلمی هنگامی است که هنوز موج اصلی گیاهچههای گونه غالب دیگر رویش پیدا نکرده است. نتایج این تحقیق اطلاعات قوی در مورد پیشبینی زمان رویش علفهای هرز خردل وحشی و شلمی ارائه میکند که میتواند به کشاورزان کمک کند تا تصمیمات مدیریتی بهتری بگیرند. | ||
کلیدواژهها | ||
الگوی رویش؛ خاکورزی؛ بدون خاکورزی؛ دز علفکش؛ رویش تجمعی | ||
مراجع | ||
Azizi, M., Soltani, D., & Khavari, E. (1999). Rapeseed: Physiology, Agronomy, Breeding, and Biotechnology. Jihad-e-Daneshghahi of Mashhad Publication. PP 230. Baskin, C.C.,& Baskin, J.M. (2014). Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination (2nd edn). San Diego, Academic Press/Elsevier. Benech-Arnold, R., Sa´nchez, R.A., Forcella, F., Kruk, B.C., &Ghersa, C.M. (2000). Environmental control of dormancy in weed seed banks in soil. Field Crops Research, 67, 105–122. Benvenuti, S., Macchia, M., &Mifle, S. (2001). Quantitative analysis of emergence of seedlings from buried weed seed with increasing soil depth. Weed Science, 49, 528–535. Bilbro, J.D., &Wanjura, D.F. (1982). Soil crusts and cotton emergence relationships. Transactions of American Society of Agricultural Engineers, 25, 1485– 1488. Bolfrey-arku, G.E.K., Chauhan, B.S., & Johnson, D.E. (2011). Seed germination ecology of itchgrass (Rottboelliacochinchinensis). Weed Science, 59, 182–187. Bond, W., Davies, G., & Turner, R. (2004). The biology and non-chemical control of common chickweed (Stellaria media L.). United Kingdom: Henry Doubleday Research Association. Brown, R.F., & Mayer, D.G. (1988). Representing cumulative germination. The use of the Weibull function and other empirically derived curves. Annals of Botany, 61, 127–138. Chauhan, B.S., Gill, G., &Preston, C. (2006). Factors affecting turnipweed (Rapistrumrugosum) seed germination in southern Australia. Weed Science, 54, 1032-1036. Cici, S.Z.H., & Van Acker, R.C. (2009). A review of the recruitment biology of winter annual weeds in Canada. Canadian Journal of Plant Science, 89, 575–589. Clayton, G.W., Harker, K.N., O’donovan, J.T., Baig, M.N., &Kidnie, M.J. (2002). Glyphosat timing and tillage system effects on glyphosate-tolerant canola (Brassica napus). Weed Technology, 16, 124-130. Dorado, J., Sousa, E., Calha, I.M., Gonzalez-Avdujar, J.L., Fernandez L.A., & Quintanilla, I.L. (2009). Predicting weed emergence in maize crops under two contrasting climatic conditions. Weed Research, 49, 251–260. Eizenberg, H., Colquhoun, J.B., & Mallory-Smith, C.A. (2005). A predictive degree-d model for small broomrape (Orobanche minor) parasitism in red clover in Oregon. Weed Science, 53, 37–40. Forouzandeh, S.A., Elahifard, E., Heidarpour, N., &Siyahpoush, A.A.R. (2017). Effect of tillage systems and herbicide application in weed control of canola (Brassica napus L.). Journal of Crop Ecophysiology, 11, 163-177. Gritsenko, M.M. (2012). An effective herbicide in rape crops. Agriculture and Plant Protection: scientific practical journal. (agris.fao.org/agrissearch/search.do?recordid=by2012001022). Gummerson, R.J. (1986). The effect of constant temperatures and osmotic potential on the germination of sugar beet. Journal of Experimental Botany, 41, 1431–1439. Harker K.N., O'Donovan J.T., Smith E.G., Johnson E.N., Peng G., Willenborg C.J., &Grenkow L.A. (2014). Seed size and seeding rate effects on canola emergence, development, yield and seed weight. Canadian Journal of Plant Science, 95, 1-8. Hasty, R.F., Sprague, C.L., & Hager, A.G. (2004). Weed control with fall and early-preplant herbicide applications in no-till soybean. Weed Technology, 18, 887–892. Izquierdo, J., Gonzalez-Andujar, J.L., Bastida, F., Lezaun, J.A., & Del Arco, M.J.S. (2009). A thermal time model to predict corn poppy (Papaver rhoeas) emergence in cereal field. Weed Science, 57, 660–664. Jennrich, H., Nuyken, W., & Jung, B. (1993). BAS526H, a new combination for flexible weed control inoilseed rape. Mededelingen Van de Faulteit Universiteit Gent,58, 853-861. Kegode, G.O., Pearce, R.B., & Bailey, T.B. (1998). Influence of fluctuating temperatures on emergence of shattercane (Sorghum bicolor) and giant foxtail (Setariafaberi). Weed Science,46, 330–335. Lee, A.T., & Witt, W.W. (2001). Persistence and efficacy of fall-applied simazine and atrazine. Proceedings of North Central Weed Science Society, 56, 50. Leon, R.G., & Owen, M.D.K. (2006). Tillage systems and seed dormancy effects on common waterhemp (Amaranthus tuberculatus) seedling emergence. Weed Science, 54, 1037–1044. Manalil, S., Ali, H.H., &Chauhan, B.S. (2018). Germination ecology of turnip weed (Rapistrumrugosum (L.) All.) in the northern regions of Australia. PLoS One, 13, e0201023. Marschner, C.A., Colucci, I., Stup, R.S., Westbrook, A.S., Brunharo, C.A.C.G., DiTommaso, A., &Mesgaran, M.B. (2024). Modeling weed seedling emergence for time-specific weed management: a systematic review. Weed Sci, 72, 1-17. Mirshekari B. (2010). Study effects of different times of weeds control on morphological traits, yield and harvest index of three winter rapeseed cultivars. Journal of Crop Production, 4, 51-66. Oryokot, J.O., & Swanton, C.J. (1997). Effect of tillage and corn on pigweed (Amaranthus spp.) seedling emergence and density. Weed Science, 45, 120–126. Pacanoski, Z. (2014). Application time and herbicide rate effects on weeds in oilseed rape (Brassica napus var. oleifera). Herbologia, 14, 20-24. Radosevish, S., Holt, J., &Ghersa, C. (2007). Ecology of Weeds and Invasive Plants: Relationship to Agriculture and Natural Resource Management.Wiley, New York. Shimi, P., Darvish, N., &Mighani, F. (2014). Investigating the efficiency of new Butisan Star herbicide in controlling weeds and yield of canola. Journal of Crop Production Research,6, 31-38. Soltani, E., Soltani, A., Galeshi, S., Ghaderi-Far, F., &Zeinali, E. (2013). Seed germination modeling of wild mustard (Sinapis arvensis L.) as affected by temperature and water potential: hydrothermal time model. Journal of Plant Production, 20, 19-33. Soltani, E., Soltani, A., Galeshi, S., Ghaderi-Far, F., &Zeinali, E. (2014). Quantification of seedling emergence of volunteer canola and wild mustard under various burial depths. Iranian Journal of Seed Research, 1, 1-10. Spokas, K., &Forcella, F. (2009). Software tools for weed seed germination modeling. Weed Science, 57, 216-227. Tomlin, C.D.S. (2004). The PesticideManual. British Crop Protection Council. pp. 1344. Vercellino, R.B., Pandolfo, C.E., Cerrota, A., Cantamutto, M., &Presotto, A. (2019). The roles of light and pericarp on seed dormancy and germination in feral Raphanus sativus (Brassicaceae). Weed Research, 59, 396-406. Zand, E., Baghestani, M.A., Nezamabadi, N., Shimi, P., & Mousavi, S.K. (2019). A guide for herbicides in Iran. UniversityPress Center, 216 pp. Zhang, C.J., Yook, M.J., Park, H.R., Lim, S.H., Kim, J.W., Nah, G., Song, H.R., Jo, B.H., Roh, K.H.,& Park, S. (2018). Assessment of potential environmental risks of transgene flow in smallholder farming systems in Asia: Brassica napus as a case study in Korea. Science of The Total Environment, 53, 688-695. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 347 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 171 |