
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 367 |
تعداد مقالات | 3,581 |
تعداد مشاهده مقاله | 4,565,863 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 5,150,137 |
بررسی واکنش افتراقی برخی ژنها تحتتاثیر تنش اکسیداتیو در سه رقم گندم نان | ||
تولید و ژنتیک گیاهی | ||
دوره 6، شماره 1 - شماره پیاپی 9، مرداد 1404، صفحه 161-174 اصل مقاله (585.65 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/plant.2025.143480.1156 | ||
نویسندگان | ||
سمیه دماوندی1؛ سعید نواب پور* 2؛ ابوالفضل مازندرانی3؛ مجتبی مولایی4 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی ، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه منابع طبیعی و علوم کشاورزی گرگان، گرگان، ایران | ||
2استاد، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی ، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه منابع طبیعی و علوم کشاورزی گرگان، گرگان، ایران | ||
3دانش آموخته دکتری، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی ، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه منابع طبیعی و علوم کشاورزی گرگان، گرگان، ایران | ||
4دانشجوی دکتری، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی ، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه منابع طبیعی و علوم کشاورزی گرگان، گرگان، ایران | ||
چکیده | ||
با هدف ارزیابی تاثیر سطوح تنش اکسیداتیو بر برخی ژنها مطالعهای بر روی سه رقم گیاه گندم (احسان، کلاته و گنبد) در گلخانه تحقیقاتی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان صورت گرفت. در این راستا، دو آزمایش مجزا مشتمل بر بررسی سطوح نیترات نقره (در سه سطح 0، 1 و 2 میلیمولار) بعنوان عامل اکسیداتیو و اسید آسکوربیک (در سه سطح 0، 10 و 20 میلیمولار) بعنوان پاداکسیدان عمومی انجام گرفت. آزمایش دوم برای تعیین اثر اختصاصی یون سوپراکسید و اکسیژن اتمی بعنوان عوامل سیگنالی یا اکسیداتیو انجام شد که از پاککنندههای اختصاصی آنها به ترتیب تیرون (با غلظت 0، 2 و 4 میلی مولار) و دبکو (با غلظت 0، 15 و 30 میلی مولار) بعنوان پیش تیمار نیترات نقره استفاده گردید. اعمال تمامی تیمارها با انجام محلول پاشی (مه پاش) در محدوده مرحله 60 زادکس (8 برگی) انجام و به منظور افزایش دقت از طرح کامل تصادفی استفاده شد. کلیه تیمارهای آزمایشی با هدف ارزیابی بیان برخی ژنها اعم از CAT، GPX، MAPK3 و MAPK6 انجام گرفت. نتایج نشان داد. بیان نسبی ژنهای MAPK3 و MAPK6 همبستگی مثبتی با افزایش میزان آسکوربیک اسید در رقم احسان نشان داد. همچنین مشخص شد MAPK6 از طریق مسیرهای سیگنالینگ خود باعث القای بیان ژن و افزایش بیان کاتالاز میگردد. در عین حال مشخص شد رقم احسان نسبت به سایر ارقام، تحتتاثیر آسکوربیک اسید عملکرد بهتری نسبت به تاثیر پاداکسیدانهای اختصاصی داشته و در شرایط تنش واکنش بهتری دارد. | ||
کلیدواژهها | ||
تنش اکسیداتیو؛ کاتالاز؛ گلوتاتیون پراکسیداز؛ گندم؛ نیترات نقره | ||
مراجع | ||
Agnieszka Gęgotek, E. S. (2022). Antioxidative and anti-inflammatory activity of ascorbic acid. MDPI, 11, 18. https://doi.org/10.3390/antiox11101993 Dudziak, K., Zapalska, M., Borner, A., Szczerba, H., Kowalczyk, K., & Nowak, M. (2019). Analysis of wheat gene expression related to the oxidative stress response and signal transduction under short-term osmotic stress. scientific reports, 9(1), 2743. https://doi.org/10.1038/s41598-019-39154-w Dutta, S., Jha, S.K., Prabhu, K.V., Kumar, M., & Mukhopadhyay, K. (2019). Leaf rust (Puccinia triticina) mediated RNAi in wheat (Triticum aestivum L.) prompting host susceptibility. Funct Integr Genomics, 19(3), 437-452. https://doi.org/10.1007/s10142-019-00655-6 E.M. Hafez, H.S.G. (2016). Effect of exogenous application of ascorbic acid on physiological and biochemical characteristics of wheat under water stress. international journal of Plant Production, 10(4), 18. https://doi.org/ 10.22069/IJPP.2016.3051 Fang, S., Sun, S., Cai, H., Zou, X., Wang, S., Hao, X., Wan, X., Tian, J., Li, Z., He, Z., Huang, W., Liang, C., Zhang, Z., Yang, L., Tian, J., Yu, B., & Sun, B. (2021). IRGM/Irgm1 facilitates macrophage apoptosis through ROS generation and MAPK signal transduction: Irgm1 (+/-) mice display increases atherosclerotic plaque stability. Theranostics, 11(19), 9358-9375. https://doi.org/10.7150/thno.62797 Farooq, A., Bukhari, S. A., Akram, N. A., Ashraf, M., Wijaya, L., Alyemeni, M. N., & Ahmad, P. (2020). Exogenously applied ascorbic acid-mediated changes in osmoprotection and oxidative defense system enhanced water stress tolerance in different cultivars of safflower (Carthamus tinctorious L.). Plants (Basel), 9(1). https://doi.org/10.3390/plants9010104 Goyal, R. K., Tulpan, D., Chomistek, N., González-Peña Fundora, D., West, C., Ellis, B. E., & Foroud, N. A. (2018). Analysis of MAPK and MAPKK gene families in wheat and related Triticeae species. BMC genomics, 19(1), 178. https://doi.org/10.1186/s12864-018-4545-9 Karimi, J., Mohsenzadeh, S., Niazi, A., & Moghadam, A. (2017). Differential expression of mitochondrial manganese superoxide dismutase (SOD) in Triticum aestivum exposed to silver nitrate and silver nanoparticles. Iran Journal Biotechnol, 15(4), 284-288. https://doi.org/10.15171/ijb.1311 Liu, X., Lin, Y., Liu, D., Wang, C., Zhao, Z., Cui, X., Liu, Y., & Yang, Y. (2017). MAPK-mediated auxin signal transduction pathways regulate the malic acid secretion under aluminum stress in wheat (Triticum aestivum L.). Scientific Reports, 7(1), 1620. https://doi.org/10.1038/s41598-017-01803-3 Liang, P. P., Chen, Z. H. A. O., Yuan, L. I. N., Geng, J. J., Yuan, C. H. E. N., Chen, D. H., & Zhang, X. (2020). Effects of sodium benzoate on growth and physiological characteristics of wheat seedlings under compound heavy metal stress. Journal of Integrative Agriculture, 19(4), 1010-1018. https://doi.org/10.1016/S2095-3119(19)62723-1 Hasanuzzaman, M. B., Anee, T. I., Parvin, K., Nahar, K., Mahmud, J., & Fujita, M. (2019). Regulation of ascorbate-glutathionepathway in mitigating oxidative damage in plants under abiotic stress [Review]. MDPI, 8, 50. https://doi.org/10.3390/antiox8090384 Majumdar, A., & Kar, R. K. (2023). Polyamines and their metabolism play pivotal role in ROS-mediated regulation of early root growth in Vigna radiata (L.) Wilczek. Journal of Plant Growth Regulation, 42(8), 5280-5293 Rashid, M. A. Nosheen, S., Noor Elahi, N., Sibgha, N., & Shah., K. H. (2021). Antioxidant defense system is a key mechanism for drought stress tolerance in wheat (Triticum aestivum L.) 11. https://doi.org/10.17582/journal.sja/2021/37.2.348.358 Navabpour, S., & Mazandarani, A. (2017). Molecular and biochemical evaluation of two bread wheat cultivars under oxidative stress,7(3),357-367. (In Persian) https://doi.org/10.22124/c.2018.5178.1202 Navabpour, S., Morris, K., Allen, R., Harrison, E., S, A. H.M., & Buchanan-Wollaston, V. (2003). Expression of senescence-enhanced genes in response to oxidative stress. Journal of Experimental Botany, 54(391), 2285-2292. https://doi.org/ 10.1093/ jxb/erg267 Navabpour, S., Yamchi, A., Bagherikia, S., & Kafi, H. (2020). Lead-induced oxidative stress and role of antioxidant defense in wheat (Triticum aestivum L.). Physiol Mol Biol Plants, 26(4), 793-802. https://doi.org/10.1007/s12298-020-00777-3 Pfaffl, M. W., Horgan, G. W., & Dempfle, L. (2002). Relative expression software tool (REST©) for group-wise comparison and statistical analysis of relative expression results in real-time PCR. Nucleic acids research, 30(9), 36. https://doi.org/10.1093/nar/30.9.e36 Poblete Aro, C. E., Russell Guzman, J. A., Soto Munoz, M. E., & Villegas Gonzalez, B. E. (2015). Effects of high intensity interval training versus moderate intensity continuous training on the reduction of oxidative stress in type 2 diabetic adult patients: CAT. Medwave, 15(7), e6212. https://doi.org/10.5867/ medwave.2015.07.6212 Rizvi, A., & Khan, M. S. (2017). Biotoxic impact of heavy metals on growth, oxidative stress and morphological changes in root structure of wheat (Triticum aestivum L.) and stress alleviation by Pseudomonas aeruginosa strain CPSB1. Chemosphere, 185, 942-952. https://doi.org/10.1016/ j.chemosphere. 2017.07.088 Rout, N. P., & Shaw, B. P. (2001). Salt tolerance in aquatic macrophytes: possible involvement of the antioxidative enzymes. Plant Science, 160(3), 415-423. https://doi.org/10.1016/S0168-9452(00)00406-4 Sharma, R., Bhardwaj, R., Thukral, A. K., Al-Huqail, A. A., Siddiqui, M. H., & Ahmad, P. (2019). Oxidative stress mitigation and initiation of antioxidant and osmoprotectant responses mediated by ascorbic acid in Brassica juncea L. subjected to copper (II) stress. Ecotoxicology and Environmental Safety, 182, 109436. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.109436 Singh, R., & Rathore, D. (2018). Oxidative stress defence responses of wheat (Triticum aestivum L.) and chilli (Capsicum annum L.) cultivars grown under textile effluent fertilization. Plant Physiology and Biochemistry, 123, 342-358. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2017.12.027 Sousa, R. H. V., Carvalho, F. E. L., Lima-Melo, Y., Alencar, V., Daloso, D. M., Margis-Pinheiro, M., Komatsu, S., & Silveira, J. A. G. (2019). Impairment of peroxisomal APX and CAT activities increases protection of photosynthesis under oxidative stress. Journal of Experimental Botany, 70(2), 627-639. https://doi.org/ 10.1093/ jxb/ery354 Taiwo, F. A. (2008). Mechanism of tiron as scavenger of superoxide ions and free electrons. Journal of spectroscopy, 22(6), 491-498. https://doi.org/10.3233/SPE-2008-0362 Wang, M., Yue, H., Feng, K., Deng, P., Song, W., & Nie, X. (2016). Genome-wide identification, phylogeny and expressional profiles of mitogen activated protein kinase kinase kinase (MAPKKK) gene family in bread wheat (Triticum aestivum L.). BMC Genomics, 17, 668. https://doi.org/10.1186/s12864-016-2993-7. Zhan, H., Yue, H., Zhao, X., Wang, M., Song, W., & Nie, X. (2017). Genome-wide identification and analysis of MAPK and MAPKK gene families in bread wheat (Triticum aestivum L.). Genes (Basel), 8(10). https://doi.org/10.3390/genes8100284 | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 33 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 22 |