| تعداد نشریات | 31 |
| تعداد شمارهها | 403 |
| تعداد مقالات | 3,921 |
| تعداد مشاهده مقاله | 5,464,719 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 5,665,198 |
مقایسه ویژگیهای جوانهزنی بذر اکوتیپهای مختلف یونجهباغی (Securigera varia L.) تحت شرایط تنش شوری | ||
| تولید و ژنتیک گیاهی | ||
| دوره 6، شماره 2 - شماره پیاپی 10، بهمن 1404، صفحه 219-238 اصل مقاله (1.61 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/plant.2025.144537.1174 | ||
| نویسندگان | ||
| رحیمه صابرفر1؛ فرزاد نظری* 2؛ غلامرضا حیدری1؛ سیروان بابایی1؛ ایوب ملا احمد نالوسی2 | ||
| 1گروه تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران | ||
| 2گروه علوم و مهندسی باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران | ||
| چکیده | ||
| مقدمه: تنش شوری، به عنوان یکی از مهمترین عوامل محدودکننده غیرزیستی، جوانهزنی، استقرار و رشد اولیه گیاهان علوفهای را در مناطق خشک و نیمهخشک تحت تأثیر قرار میدهد. این تنش با ایجاد اختلال در فرآیندهای فیزیولوژیک گیاه از طریق ایجاد تنش اسمزی و عدم تعادل یونی، سبب کاهش رشد و عملکرد میشود. یونجه باغی بهعنوان یک گیاه لگوم چندساله با توانایی تثبیت نیتروژن و سازگاری نسبی با شرایط نامساعد محیطی، اهمیت زیادی در تولید علوفه دارد. با این وجود، واکنش اکوتیپهای مختلف این گونه به تنش شوری، به ویژه در مراحل اولیه رشد، میتواند متفاوت باشد. بنابراین، هدف از این پژوهش بررسی اثر تنش شوری بر شاخصهای جوانهزنی و رشد گیاهچه اکوتیپهای مختلف یونجه باغی و شناسایی اکوتیپهای متحمل به شوری است. مواد و روشها: بهمنظور بررسی تأثیر تنش شوری بر جوانهزنی بذر و رشد گیاهچههای یونجه باغی، آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار بر روی بذور ۱۰ اکوتیپ جمعآوریشده از شهرستانهای مختلف انجام شد .فاکتور اول (اکوتیپها) و فاکتور دوم سطوح شوری (صفر، ۲۵، ۵۰، ۱۰۰، ۱۵۰ و ۲۰۰ میلیمولار کلرید سدیم) بود. بذرها در شرایط کنترلشده آزمایشگاهی کشت شدند و پس از پایان دوره آزمایش، صفات درصد و سرعت جوانهزنی، میانگین جوانهزنی روزانه، میانگین زمان جوانهزنی، طول ریشهچه، ساقهچه و گیاهچه، شاخص بنیه بذر، وزن خشک گیاهچه و ضریب آلومتریک اندازهگیری گردید. همچنین شاخص تحمل به شوری (TI) و شاخص حساسیت به شوری (SI) برای اکوتیپها محاسبه شد. برای گروهبندی اکوتیپها از نظر میزان تحمل به شوری، از تحلیل خوشهبندی سلسلهمراتبی استفاده گردید. یافتهها: نتایج نشان داد با افزایش غلظت شوری تا ۲۰۰ میلیمولار، درصد و سرعت جوانهزنی اکوتیپها کاهش معنیداری داشت. اکوتیپ نهاوند بهترین عملکرد را با ۴۸ درصد جوانهزنی در ۲۰۰ میلیمولار و بالاترین سرعت جوانهزنی حفظ کرد، درحالیکه اکوتیپهای همدان با 4 درصد جوانهزنی، بیشترین کاهش را نشان دادند. میانگین جوانهزنی روزانه در سطوح پایین شوری تقریباً ثابت ماند اما در سطوح بالاتر، کاهش یافت. میانگین زمان جوانهزنی در تمامی اکوتیپها با افزایش شوری طولانیتر شد. طول ریشهچه، ساقهچه و گیاهچه، شاخص بنیه بذر، وزن خشک گیاهچه و ضریب آلومتریک نیز بهطور قابل توجهی با افزایش شوری کاهش یافتند. اکوتیپ نهاوند در این شاخصها عملکرد بهتری نسبت به سایر اکوتیپها داشت. با افزایش شوری، شاخص تحمل به شوری (TI) و حساسیت به شوری (SI) همه اکوتیپها کاهش یافت. اکوتیپ نهاوند بیشترین تحمل (9/116) و اکوتیپهای مریوان و ایلام بیشترین حساسیت (بهترتیب 97/74- و 59/75-) را نشان دادند. تحلیل خوشهبندی سلسلهمراتبی نشان داد که اکوتیپهای نهاوند و سمنان در تمام سطوح شوری، عملکرد بهتری داشتند و در گروه مقاوم قرار گرفتند و اکوتیپهای همدان، پاوه، سروآباد، ایلام و مریوان گروه حساس را در سطوح شوری بالاتر از 25 میلی مولار تشکیل دادند. نتیجهگیری: بهطور کلی، نتایج این پژوهش نشان داد که واکنش اکوتیپهای یونجه باغی به تنش شوری بهطور قابل توجهی متفاوت است و انتخاب اکوتیپهای مقاوم مانند نهاوند و سمنان میتواند بهعنوان یک راهکار مؤثر برای افزایش پایداری تولید و بهبود عملکرد در مناطق شور و نیمهخشک مورد استفاده قرار گیرد. پیشنهاد میشود مطالعات آینده به بررسی عملکرد این اکوتیپها در شرایط مزرعه و در مراحل رشد بعدی (رویشی و زایشی) اختصاص یابد تا پایداری صفات مقاومتی آنها در شرایط واقعی زراعی ارزیابی شود. | ||
| کلیدواژهها | ||
| شاخص بنیه بذر؛ ضریب آلومتریک؛ شاخص تحمل شوری؛ شاخص حساسیت | ||
| مراجع | ||
|
Abdul-Baki, A. A., & Anderson, J. D. (1973). Vigor determination in soybean seed by multiple criteria. Crop Science, 13(6), 630–633. https://doi.org/10.2135/cropsci1973.0011183X001300060013x Aghighi Shahverdikani, M., Tobeh, A., Jahanbakhsh Godehkahriz, S., & Rastegar, Z. (2011). The study of germination index of canola cultivars for drought resistance. International Journal of Agronomy & Plant Production, 2(3), 89–95. http://www.victorquestpub.com Ahmadi, F., Nazari, F., Ghaderi, N., & Teixeira da Silva, J. A. (2023) Assessment of morpho-physiological and biochemical responses of perennial ryegrass to gamma-aminobutyric acid (GABA) application under salinity stress using multivariate analyses techniques. Journal of Plant Growth Regulation, 42, 168–182. https://doi.org/10.1007/s00344-021-10538-5 Bewley, J. D., Bradford, K. J., Hilhorst, H. W. M., & Nonogaki, H. (2013). Seeds: Physiology of development, germination & dormancy (3rd ed.). Springer. https://doi.org/10.1007/978-1-4614-4693-4 Bhardwaj, S. H., Sharma, N. K., Srivastava, P. K., & Shukla, G. (2010). Salt tolerance assessment in alfalfa (Medicago sativa L.) ecotypes. Botany Research Journal, 3(1–4), 1–6. https://doi.org/10.3923/brj.2010.1.6 Bhattarai, S., Lundell, S., & Biligetu, B. (2022). Effect of sodium chloride salt on germination, growth, and elemental composition of alfalfa cultivars with different tolerances to salinity. Agronomy, 12(10), 2420. https://doi.org/10.3390/agronomy12102420 Blum, A. (1988). Plant breeding for stress environments (1st ed.). CRC Press. https://doi.org/10.1201/9781351075718 Brenchley, J. L., & Probert, R. J. (1998). Seed germination responses to some environmental factors in the seagrass Zostera capricorni from eastern Australia. Aquatic Botany, 62, 177–188. https://doi.org/10.1016/S0304-3770(98)00095-7 Bulut, H., & Gürkan, H. (2017). Drought stress due to climate change and effects on plants. In Proceedings of the 8th Atmospheric Sciences Symposium (pp. 123–130). Istanbul, Turkey. Causin, H. F., Bordon, D. A., & Burrieza, H. (2020). Salinity tolerance mechanisms during germination and early seedling growth in Chenopodium quinoa Willd. genotypes with different sensitivity to saline stress. Environmental and Experimental Botany, 172, 103999. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2019.103999 Cheeseman, J. M. (2015). The evolution of halophytes, glycophytes, and crops, and its implications for food security under saline conditions. New Phytologist, 206(2), 557–570. https://doi.org/10.1111/nph.13217 Daneshnia, F., & Chaichi, M. R. (2018). Field treatment effects on seed germination and early growth traits of berseem clover under salinity stress conditions. Current Investigations in Agriculture and Current Research, 2(1), 4–7. Ebrahimi, M., & Miri, E. (2016). Effect of humic acid on seed germination and seedling growth of Borago officinalis and Cichorium intybus. Ecopersia, 4(1), 1239–1249. https://doi.org/10.18869/modares.ecopersia.4.1.1239 Ebrahimi, O., Esmaili, M. M., Saboori, H., & Tahmasbi, A. (2013). Effect of drought and salinity stress on germination of Trifolium pratense, Vicia sativa, and Sanguisorba minor. International Journal of Agronomy and Plant Production, 4(3), 384–388. Farissi, M., Bouizgaren, A., Faghire, M., Bargaz, A., & Ghoulam, C. (2011). Agro-physiological responses of Moroccan alfalfa (Medicago sativa L.) populations to salt stress during germination and early seedling stages. Seed Science and Technology, 39(2), 389–401. https://doi.org/10.15258/sst.2011.39.2.11 Gad, M., Chao, H. B., Li, H. X., Zhao, W. G., Lu, G. Y., & Li, M. T. (2021). QTL mapping for seed germination response to drought stress in Brassica napus. Frontiers in Plant Science, 11, 629970. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.629970 Khan, M. A., Fawad, M., Jamal, A., Ali, A., & Ahmad, R. (2025). Influence of varying salinity on germination indices and threshold of salt tolerance in alfalfa (Medicago sativa L.). Sarhad Journal of Agriculture, 41(2), 528–537. Liu, B. H., Liu, X. H., Liu, F. C., Ma, H. L., Ma, B. Y., & Peng, L. (2021). Stress tolerance of Xerocomus badius and its promotion effect on seed germination and seedling growth of annual ryegrass under salt and drought stresses. AMB Express, 11, 15–23. https://doi.org/10.1186/s13568-020-01172-7 Luan, Z. H., Xiao, M. X., Zhou, D. W., Zhang, H. X., Tian, Y., Wu, Y., et al. (2014). Effects of salinity, temperature, and polyethylene glycol on the seed germination of sunflower (Helianthus annuus L.). Scientific World Journal, 2014, 170418. https://doi.org/10.1155/2014/170418 Ma, L., Wei, J., Han, G., Sun, X., & Yang, X. (2024). Seed osmopriming with polyethylene glycol (PEG) enhances seed germination and seedling physiological traits of Coronilla varia L. under water stress. PLOS ONE, 19(5), e0302197. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0302197 Maguire, J. D. (1962). Speed of germination—aids in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science, 2(2), 176–177. https://doi.org/10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x Martins, R., José, A., Faria, J. M., & Melo, L. A. (2019). Effect of water and salt stress on seeds germination and vigor of different Eucalyptus species. Journal of Tropical Forest Science, 31, 12–18. https://doi.org/10.26525/jtfs2019.31.1.012018 Mbarki, S., Skalicky, M., Vachova, P., Hajihashemi, S., Jouini, L., Zivcak, M., ... & Zoghlami Khelil, A. (2020). Comparing salt tolerance at seedling and germination stages in local populations of Medicago ciliaris L. to Medicago intertexta L. and Medicago scutellata L. Plants, 9(4), 526. https://doi.org/10.3390/plants9040526 Molano-Flores, B. (2014). An invasive plant species decreases native plant reproductive success. Natural Areas Journal, 34(4), 465–470. https://doi.org/10.3375/043.034.0411 Moradian, Z., Rahdan, A., & Bazmakani, R. (2024). Germination responses and phenolic compounds of Securigera securidaca L. seeds under drought and salinity stress conditions. Agrotechniques in Industrial Crops, 4(4), 205–212. https://doi.org/10.22126/ATIC.2024.10276.1139 Nezamivand Chegini, R., Benakashani, F., Alahdadi, I., & Soltani, E. (2021). Quantification of salinity stress and drought effects on fourteen ecotypes of black caraway (Nigella sativa L.) medicinal plant. Environmental Stresses in Crop Sciences, 14(1), 211–220. https://doi.org/10.22077/escs.2020.2653.1688 Niste, M., Vidican, R., Stoian, V., Berindean, I., Criste, A., Miclea, R., & Pop, R. (2015). The effect of salinity stress on seed germination of red clover (Trifolium pratense L.) and alfalfa (Medicago sativa L.) varieties. Bulletin of University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Agriculture, 72(2), 447–452. https://doi.org/10.15835/buasvmcn-agr:11706 Osborne, J. M., Fox, J. E. D., & Mercer, S. (1993). Germination response under elevated salinities of six semi-arid blue bush species (Western Australia). In H. Lieth & A. Al Masoom (Eds.), Towards the rational use of high salinity plants (Vol. 1, pp. 323–338). Springer. Ranal, M. A., & Santana, D. G. de. (2006). How & why to measure the germination process? Brazilian Journal of Botany, 29(1), 1–11. https://doi.org/10.1590/S0100-84042006000100002 Salehi Shanjani, P., Rasoulzadeh, L., & Javadi, H. (2023). Evaluation of morphological traits in the populations of Coronilla varia L. Journal of Rangeland Science, 13(1), 52–71. Scott, S. J., Jones, R. A., & Williams, W. A. (1984). Review of data analysis methods for seed germination. Crop Science, 24, 1192–1199. https://doi.org/10.2135/cropsci1984.0011183X002400060049x Simmons, M., Bertelsen, M., Windhager, S., & Zafian, H. (2011). The performance of native and nonnative turfgrass monocultures and native turfgrass polycultures: An ecological approach to sustainable lawns. Ecological Engineering, 37(8), 1095–1103. https://doi.org/10.1016/j.ecoleng.2010.07.043 Sofi, A., Ebrahimi, M., & Shirmohammadi, E. (2018). Effect of humic acid on germination, growth, and photosynthetic pigments of Medicago sativa L. under salt stress. Ecopersia, 6(1), 21–30. http://ecopersia.modares.ac.ir/article-24-14655-en.html Soltani, A., Khodarahmpour, Z., Jafari, A. A., & Nakhjavan, S. (2012). Selection of alfalfa (Medicago sativa L.) cultivars for salt stress tolerance using germination indices. African Journal of Biotechnology, 11(31), 7899–7905. https://doi.org/10.5897/AJB11.3977 Souza, M. L., & Fagundes, M. (2014). Seed size as key factor in germination and seedling development of Copaifera langsdorffii (Fabaceae). American Journal of Plant Sciences, 5, 2566–2573. https://doi.org/10.4236/ajps.2014.517270 Tariq, M., Khan, F., Shah, A. H., Fahad, S., Wahid, F., Ali, J., ... & Battaglia, M. L. (2020). Effect of micronutrients foliar supplementation on the production and eminence of plum (Prunus domestica L.). Quality Assurance and Safety of Crops & Foods, 12(Special Issue 1), 32–40. https://doi.org/10.15586/qas.v12isp1.793 Thouraya, R., Hnan, I., Ilahy, R., Benali, A., & Jebari, H. (2013). Effet du stress salin sur le comportement physiologique et métabolique de trois variétés de piment (Capsicum annuum L.). Journal of Applied Biosciences, 66, 5060–5069. https://doi.org/10.4314/jab.v66i0.95004 Torabi, M. (2010). Physiological and biochemical responses of Iranian alfalfa (Medicago sativa L.) ecotypes to salt stress (Doctoral dissertation, Universiti Putra Malaysia). Wang, Y., Diao, P., Kong, L., Yu, R., Zhang, M., Zuo, T., Fan, Y., Niu, Y., Yan, F., & Wuriyanghan, H. (2020). Ethylene enhances seed germination and seedling growth under salinity by reducing oxidative stress and promoting chlorophyll content via ETR2 pathway. Frontiers in Plant Science, 11, 1066. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.01066 Wu, C., Wang, Q., Xie, B., Wang, Z., Cui, J., & Hu, T. (2011). Effects of drought and salt stress on seed germination of three leguminous species. African Journal of Biotechnology, 10(78), 17954–17961. https://doi.org/10.5897/AJB11.2018 Xie, J., Li, Y., Jiang, G., Sun, H., Liu, X., & Han, L. (2023). Seed color represents salt resistance of alfalfa seeds (Medicago sativa L.): Based on the analysis of germination characteristics, seedling growth and seed traits. Frontiers in Plant Science, 14, 1104948. https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1104948 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 70 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 25 |
||