| تعداد نشریات | 31 |
| تعداد شمارهها | 403 |
| تعداد مقالات | 3,921 |
| تعداد مشاهده مقاله | 5,465,155 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 5,665,450 |
اثر عصاره آبی سورگوم (Sorghum bicolor L.) در مهار جوانهزنی علفهای هرز و رشد بادامزمینی (Arachis hypogea L.) | ||
| تولید و ژنتیک گیاهی | ||
| دوره 6، شماره 2 - شماره پیاپی 10، بهمن 1404، صفحه 271-286 اصل مقاله (1.46 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/plant.2026.144773.1177 | ||
| نویسندگان | ||
| اعظم حاتمی همپا1؛ محمدتقی آل ابراهیم* 1؛ سلیم فرزانه1؛ الهام صمدی کلخوران2؛ سیده آسیه خاتمی1 | ||
| 1گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده علوم و فناوری کشاورزی، دانشگاه محقق اردبیلی اردبیل، ایران | ||
| 2بخش تحیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان همدان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، همدان، ایران | ||
| چکیده | ||
| مقدمه: علفهای هرز بهعنوان گیاهان نامطلوب و زیانآور، اثرات منفی قابلتوجهی بر رشد گیاهان زراعی داشته و با کاهش پتانسیل تولید، موجب افت کمی و کیفی محصولات کشاورزی در مزارع میشوند؛ امری که در نهایت خسارات اقتصادی چشمگیری را به کشاورزان تحمیل میکند. آللوپاتی پدیدهای اکولوژیکی است که طی آن، ترکیبات زیستی فعال از سوی برخی گیاهان زراعی، گیاهان کشتشده و همچنین میکروارگانیسمهایی نظیر باکتریها و قارچها به ریزوسفر خاک ترشح شده و بر رشد و فعالیت سایر موجودات زنده پیرامون اثر میگذارند. سورگوم بهدلیل برخورداری از ویژگیهای آللوپاتیک برجسته، قادر است ترکیبات زیستی متنوعی را از طریق ریشههای موئین، ساقهها و دانههای خود تولید و آزاد کند. سورگوم (Sorghum bicolor L.) بهعنوان یک گیاه آللوپاتیک شناختهشده، بهواسطه سنتز ترکیب سورگولئون، توانایی بالایی در سرکوب رشد علفهای هرز دارد. مواد و روشها: این پژوهش با هدف بررسی اثر عصاره آبی سورگوم بر جوانهزنی بذر، رشد گیاهچه، وزن تر و خشک دو گونه علف هرز سلمهتره (Chenopodium album L.) و تاجخروس (Amaranthus retroflexus L.) و همچنین گیاه زراعی بادامزمینی (Arachis hypogaea L.) انجام شد. تیمارها شامل هفت سطح غلظت عصاره (0، 50، 100، 150، 200، 250 و 300 گرم در لیتر) بودند که بر روی هر سه گونه گیاهی اعمال شدند. صفات مورد بررسی شامل درصد جوانهزنی، سرعت جوانهزنی، متوسط زمان جوانهزنی، وزن تر و خشک و طول گیاهچه علفهای هرز و بادامزمینی بود. نتایج: نتایج نشان داد که با افزایش غلظت عصاره، درصد جوانهزنی گونههای علف هرز بهطور معنیداری کاهش یافت، بهگونهای که در غلظتهای 200 تا 300 گرم در لیتر، جوانهزنی تقریباً بهطور کامل مهار شد. در مقابل، گیاه بادامزمینی از تحمل نسبی برخوردار بود و حتی در بالاترین غلظتها، تنها کاهش جزئی در درصد و سرعت جوانهزنی نشان داد. متوسط زمان جوانهزنی در علفهای هرز یا کاهش یافت و یا بهصورت نامنظم تحت تأثیر قرار گرفت، در حالی که در بادامزمینی افزایش جزئی در متوسط زمان جوانهزنی مشاهده شد که بیانگر تأخیر جزئی در فرآیند جوانهزنی است. پاسخهای مربوط به رشد گیاهچه نیز بین گونهها متفاوت بود؛ بهطوریکه طول گیاهچه و وزن تر و خشک علفهای هرز بهطور قابلتوجهی کاهش یافت، در حالی که گیاهچههای بادامزمینی در غلظتهای بالاتر تنها کاهش متوسطی نشان دادند. مقادیر ED₅₀ نیز حساسیت بالاتر گونههای علف هرز را نسبت به بادامزمینی تأیید کرد. نتیجهگیری: در مجموع، نتایج این پژوهش نشان میدهد که عصاره آبی سورگوم میتواند بهعنوان یک مهارکننده طبیعی مؤثر در کنترل علفهای هرز عمل کند، در حالی که اثرات محدودی بر گیاه زراعی دارد؛ موضوعی که کاربرد بالقوه آن را در مدیریت زیستی علفهای هرز و کاهش مصرف علفکشهای شیمیایی برجسته میسازد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| آللوپاتی؛ تاجخروس ریشه قرمز؛ درصد جوانهزنی؛ سلمهتره؛ وزن خشک | ||
| مراجع | ||
|
Abu-Nassar, J., & Matzrafi, M. (2021). Effect of herbicides on the management of the invasive weed Solanum rostratum Dunal. (Solanaceae). Plants, 10(2), 284. https://doi.org/10.3390/plants10020284 Alam, S. M., Ala, S. A., Azmi, A. R., Khan, M. A., & Ansari, R. (2001). Allelopathy and its role in agriculture. Journal of Biological Sciences, 1(5), 308-315. https://doi.org/ 10.3923/jbs.2001.308.315 Alsaadawi, I. S., Al-Khateeb, T.A., Hadwan, H. A. & Lahmood, N. R. (2015). A chemical basis for differential allelopathic potential of root exudates of Sorghum bicolor L. (Moench) cultivars on companion weeds. Journal of Allelochemical Interactions, 1(1), 49-55. https://doi.org/ 10.22067/JPP.V32I1.62909 Al-Samarai, G. F., Mahdi, W. M., & Al-Hilali, B. M. (2018). Reducing environmental pollution by chemical herbicides using natural plant derivatives–allelopathy effect. Annals of Agricultural and Environmental Medicine, 25(3), 449-452. https://doi.org/ 10.26444/aaem/90888 Bai, B., Xu, X., Hai, J., Hu, N., Wang, H., & Suo, Y. (2019). Lauric acid‐modified nitraria seed meal composite as green carrier material for pesticide-controlled release. Journal of Chemistry, 1, 5376452. https://doi.org/10.1155/2019/5376452 Basuchaudhuri, P. (2022). Physiology of the Peanut Plant. CRC Press, 430p. https://doi.org/10.1201/9781003262220 Carroll Johnson III, W., & Mullinix Jr, B. G. (2005). Texas panicum (Panicum texanum) interference in peanut (Arachis hypogaea) and implications for treatment decisions. Peanut Sciences, 32(1), 68-72. https://doi.org/10.3146/0095-3679 EI-Khatib, A. A., Hegazy, A. K., & Galal, H. K. (2004). Does allelopathy have a role in the ecology of Chenopodium murale? In Annales Botanici Fennici (pp. 37-45). Finnish Zoological and Botanical Publishing Board. Ellis, R. H., & Roberts, E. H. (1981). The quantification of ageing and survival in orthodox seeds. Seed Science and Technolgy, 9, 377-409. Fateh, E., Sohrabi, S. S., & Gerami, F. (2012). Evaluation of the allelopathic effect of bindweed (Convolvulus arvensis L.) on germination and seedling growth of millet and basil. Advances in Environmental Biology, 6(3), 940-950 Goulson, D., Thompson, J., & Croombs, A. (2018). Rapid rise in toxic load for bees revealed by analysis of pesticide use in Great Britain. Peer Journal, 6, 5255. https://doi.org/10.7717/peerj.5255 Gupta, D. K., Palma, J. M., & Corpas, F. J. (2018). Antioxidants and antioxidant enzymes in higher plants (pp. 1-300). Berlin: Springer International Publishing. https://doi.org/ 10.1007/978-3-319-75088-0 Hatami Hampa, A., Javanmard, A., Alebrahim, M. T., & Sofalian, O. (2018). allelopathic effects of the aqueous extract of Russian knapweed (Acroptilon repens L.) and sorghum (Sorghum bicolor) on germination indices and enzymatic activity of some cultivated plants and weeds. Journal of Advances in Plant Protection, 31(4), 676-689. https://doi.org/ 10.22034/PLANT.2023.62944 Hura, T., Dubert, F., Dąbkowska, T., Stupnicka-Rodzynkiewicz, E., Stokłosa, A.. & Lepiarczyk, A. (2006). Quantitative analysis of phenolics in selected crop species and biological activity of these compounds evaluated by sensitivity of Echinochloa crus-galli. Acta Physiologiae Plantarum, 28(6), 537-545. https://doi.org/ 10.1007/s11738-006-0049-3 Hussain, M. I., Danish, S., Sánchez-Moreiras, A. M., Vicente, Ó., Jabran, K., Chaudhry, U. K., Branca, F., & Reigosa, M. J., (2021). Unraveling sorghum allelopathy in agriculture: Concepts and implications. Plants, 10(9), 1795. https://doi.org/10.3390/plants10091795 Hussain, M. I., El-Sheikh, M. A., & Reigosa, M. J. (2020). Allelopathic potential of aqueous extract from Acacia melanoxylon R. Br. on Lactuca sativa. Plants, 9(9), 1228. https://doi.org/10.3390/plants9091228 Inderjit, Duke, S. O. (2003). Eco physiological aspects of allelopathy. Planta, 217, 529-539. https://doi.org/ 10.1007/s00425-003-1054-z Kang, G. Q., Wan, F. H., Liu, X., & Guo, L. (2008). Influence of two allelochemicals from Ageratina Adenophora Sprengel on ABA, IAA and ZR contents in roots of upland rice seedlings. Allelopathy Journal, 21, 253-262. https://doi.org/ 10.1007/s00425-003-1054-z Khamare, Y., Chen, J., & Marble, S. C. (2022). Allelopathy and its application as a weed management tool: A review. Frontiers in Plant Science, 13, 1034649. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.1034649 Macías, F. A., Mejías, F. J., & Molinillo, J. M. (2019). Recent advances in allelopathy for weed control: from knowledge to applications. Pest Management Science, 75(9), 2413-2436. https://doi.org/ 10.1002/ps.5355 Maguire, J. D. (1962). Speed of germination—aids in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science, 2, 176–177. https://doi.org/10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x Patil, M. B., Jalapure, S. S., Prakash, N. S., & Kokate, C. K. (1983). Anticellular properties of alcoholic extract of Sorghum spp. in rats. ISHS Press. Perry D. (1981). Methodology & application of vigor tests. In: Handbook of vigor test methods. Ranal, M. A., & Santana, D. G. D. (2006). How and why to measure the germination process? Brazilian Journal of Botany, 29, 1-11. Reidsma, P., Accatino, F., Appel, F., Gavrilescu, C., Krupin, V., Tasevska, G. M., Meuwissen, M. P., Peneva, M., Severini, S., Soriano, B., & Urquhart, J. (2023). Alternative systems and strategies to improve future sustainability and resilience of farming systems across Europe: from adaptation to transformation. Land Use Policy, 134, 106881. https://doi.org/10.1016/j.landusepol.2023.106881 Ritz, C., Baty, F., Streibig, J. C., & Gerhard, D. (2015). Dose-Response Analysis Using R. Plos One, 10(12), 0146021. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0146021 Roberta, M., Donato, L., Stefen, B., Vanti, M., Clarazain, M., & Goseppe, Z. (2010). Temperature and water potential as parameters for modeling weed emergence in central- northern Italy. Weed Science, 58, 216-222. Sarić-Krsmanović, M., Gajić Umiljendić, J., Radivojević, L., Šantrić, L., Potočnik, I., & Đurović-Pejčev, R. (2019). Bio-herbicidal effects of five essential oils on germination and early seedling growth of velvetleaf (Abutilon theophrasti Medik.). Journal of Environmental Sciences. and Health, Part B, 54(4), 247-251. https://doi.org/ 10.1080/03601234.2018.1550309 Scott, S. J., Jones, R. A., & Williams, W., (1984). Review of data analysis methods for seed germination 1. Crop Sciences, 24(6), 1192-1199. https://doi.org/10.2135/cropsci1984.0011183X002400060043x Shang, Z. H., & Xu, S. G., (2012). Allelopathic testing of Pedicularis kansuensis (Scrophulariaceae) on seed germination and seedling growth of two native grasses in the Tibetan plateau. Fyton, 81, 75-79. https://doi.org/10.32604/phyton.2012.81.075 Sturm, D. J., Kunz, C., & Grehards, R. (2016). Inhibitory effects of cover mulch on germination and growth of Stellaria media (L.) Vill. Chenopodium album L. and Matricaria chamomilla L. Crop Protection, 90, 121-130. https://doi.org/ 10.1016/j.cropro.2016.08.032 Ullah, R., Aslam, Z., Attia, H., Sultan, K., Alamer, K. H., Mansha, M. Z., Althobaiti, A. T., Al Kashgry, N. A. T., Algethami, B., & Zaman, Q. U., (2022). Sorghum allelopathy: alternative weed management strategy and its impact on mung bean productivity and soil rhizosphere properties. Life, 12(9), 1359. https://doi.org/ 10.1016/j.cropro.2016.08.032 Weston, L. A. (1996). Utilization of Allelopathy for Weed Management in Agroecosystems. Agronomy Journal, 88, 860-866. https://doi.org/10.2134/agronj1996.00021962003600060004x Weston, L. A., Alsaadawi, I. S. & Baerson, S. R. (2013). Sorghum allelopathy--from ecosystem to molecule. Journal of Chemical Ecology, 39(2), 142-53. https://doi.org/ 10.1007/s10886-013-0245-8 Yang, C. M., Lee, C. N., & Chou, C. H. (2002). The biology of Canadian weeds Amaranthus retroflexus L., A. powelli Swatson and A. hybridus L. Canadian Journal of Plant Science, 84, 631-668. https://doi.org/ 10.4141/P02-183 Yar, S., Khan, E., Hussain, I., Raza, B., Abbas, M., & Munazza, Z. (2020). Allelopathic influence of sorghum aqueous extracts and sorghum powder on germination indices and seedling vigor of hybrid corn and jungle rice. Planta Daninha, 38, 020192192. https://doi.org/ 10.1590/s0100-83582020380100005 Yarnia, M., Benam, M. K., & Tabrizi, E. F. M. (2009). Allelopathic effects of sorghum extracts on Amaranthus retroflexus seed germination and growth. Journal of Food Agriculture and Environment, 7(4), 770-774. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 57 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 49 |
||